【GB 14963—2011 】食品安全国家标准 蜂蜜

                                中华人民共和国国家标准
                                  GB 14963—2011
                                  食品安全国家标准
                                      蜂蜜
                                中华人民共和国卫生部发布
                           2011-04-20 发布2011-10-20 实施
                                  GB 14963—2011

前言

本标准代替GB 14963-2003《蜂蜜卫生标准》以及GB 18796-2005《蜂蜜》中的对应
指标。
本标准与GB 14693-2003 相比主要变化如下:
——修改了范围;
——增加了蜂蜜的定义;
——将原料要求改为蜜源要求,并明确主要的有毒蜜源植物品种名称;
——修改了感官要求;
——修改了理化指标;
——增加了污染物限量、兽药残留限量、农药残留限量要求;
——增加了嗜渗酵母计数要求。

食品安全国家标准

蜂蜜

1 范围
本标准适用于蜂蜜,不适用于蜂蜜制品。
2 术语和定义
蜂蜜
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露,与自身分泌物混合后,经充分酿造而成的天然甜
物质。
3 技术要求
3.1 蜜源要求
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露应安全无毒,不得来源于雷公藤(Tripterygium
wilfordii Hook.F.)、博落回[Macleaya cordata (Willd.) R.Br]、狼毒(Stellera chamaejasme L.)
等有毒蜜源植物。
3.2 感官要求
QQ20121010103710
感官要求应符合表1 的规定。

3.3 理化指标
QQ20121010103748
理化指标应符合表2 的规定。

3.4 污染物限量
污染物限量应符合GB 2762 的规定。
3.5 兽药残留限量和农药残留限量
3.5.1 兽药残留限量
兽药残留限量应符合相关标准的规定。
3.5.2 农药残留限量
农药残留限量应符合GB 2763 及相关规定。
3.6 微生物限量
3
微生物限量应符合表3 规定。

附录A
嗜渗酵母计数
A.1 设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:
A.1.1 恒温培养箱:25 ℃±1 ℃。
A.1.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。
A.1.3 均质器及无菌均质袋、均质杯或灭菌乳钵。
A.1.4 天平: 感量0.1 g。
A.1.5 无菌试管:18 mm×180 mm。
A.1.6 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL 刻度),10 mL(具0.1 mL 刻度),或微量移液器及吸
头。
A.1.7 无菌锥形瓶:500 mL,250 mL。
A.1.8 无菌培养皿:直径90 mm。
A.1.9 无菌L 型涂布棒:玻璃、塑料或者不锈钢材料制成,棒体直径不应大于2 mm。
A.1.10 显微镜: 10×~100×。
A.2 培养基和试剂
A.2.1 30%葡萄糖溶液(pH 6.5±0.5)
A.2.1.1 成分
无水葡萄糖30.0 g
蒸馏水100 mL
A.2.1.2 制法
称量适量葡萄糖,溶解在蒸馏水中,必要时调节pH 为6.4 左右。分装后,115 ℃高压灭
菌20 min。
A.2.2 氯硝胺18%甘油( DG18)琼脂
A.2.2.1 成分
酪蛋白胨5.0 g
无水葡萄糖10.0 g
磷酸二氢钾1.0 g
硫酸镁(MgSO4·H2O) 0.5 g
氯硝胺0.002 g
无水甘油200 g
琼脂15 g
氯霉素0.1 g
蒸馏水1000 mL
A.2.2.2 制法
除氯霉素外,将全部成分加热煮沸至完全溶解,如有必要,调节pH 为6.4 左右。加入抗
菌素,121 ℃高压灭菌15 min,最终的pH 应为5.6±0.2。灭菌后,立即在44 ℃~47 ℃水浴
冷却至50 ℃以下,在每个灭菌平皿中倾注大约15 mL~20 mL 培养基,放置在水平的台面上
冷却固化备用。如有必要,可以放在36 ℃培养箱中过夜,使琼脂表面干燥无水珠。避光保存。
A.3 检验程序
嗜渗酵母检验程序见图A.1。
GB 14963—2011
4
图A.1 嗜渗酵母检验程序图
A.4 操作步骤
A.4.1 样品采集和保存
样品采集后,应尽可能及时检验。若不能及时检验,普通样品应置2 ℃~5 ℃冰箱保存,
在24 h 内检验。冷冻样品应在45 ℃以下不超过15 min 或在2 ℃~5 ℃不超过18 h 解冻。
A.4.2 样品稀释
A.4.2.1 取样
以无菌操作在天平上称取固体或液体检样25 g,加入30%葡萄糖稀释液225 g,用旋转
刀片式均质器以8000 r/min 均质1 min,或拍击式均质器拍击2 min,制备成1:10 的均匀稀释
液。如无均质器,则将样品放入加有玻璃珠的无菌锥形瓶中,并充分振荡。
A.4.2.2 梯度稀释
用灭菌吸管吸取1:10 稀释液1 mL,注入含有9 mL 30%葡萄糖稀释液的试管内,置于漩
涡混悬仪上混匀,制备1:100 的稀释液。另取1 mL 灭菌吸管,按前操作依次制备10 倍递增
稀释液,每递增稀释一次,换用1 支1 mL 灭菌吸管。
A.4.3 涂布和培养
A.4.3.1 根据对检样污染情况的估计,选择2 个~3 个连续的适宜稀释度,每个稀释度接种2
个DG18 琼脂平板。在充分混合稀释液之后,立即在每个平板表面接种0.1 mL,接着用无菌
的L 型涂布棒进行充分的琼脂表面涂布。注意涂布棒下端不得触碰培养皿的侧缘。进行样品
检验的同时,应同时在2 个DG18 琼脂平板表面接种0.1 mL 的稀释液作为空白对照。
A.4.3.2 接种完成后,尽快将全部平板置25 ℃±1 ℃恒温箱内避光培养。培养时勿翻转培养
皿。为防止出现霉菌的过度蔓延生长掩盖了目标菌落,在培养48 h 后,即开始每日观察平板
上面真菌生长情况。培养7 d 结束。
A.4.4 菌落计数
A.4.4.1 选择菌落数量在15~150 之间的平板,计数菌落数量。
25 ℃±1 ℃,5 d~7 d
样品25 g+225 g 30%葡萄糖溶液,充分振荡或均质
10 倍系列稀释
报告
选择2 个~3 个适当稀释度,各0.1 mL 涂布2 个DG18 琼脂
菌落计数。根据需要,
显微镜下观察可疑菌落
GB 14963—2011
5
A.4.4.2 典型的嗜渗酵母在DG18 琼脂平板上呈现为圆形、中心隆起、不透明、边缘整齐的
菌落,直径1 mm~2 mm。必要时,可利用低倍显微镜直接观察平板上生长的菌落是否为细
菌菌落。如出现霉菌菌落干扰时,不应计数丝状菌落。
A.4.5 报告
参照GB 4789.2 的报告方式,以CFU/g 为单位报告样品中嗜渗酵母的数量。